免疫細(xì)胞的精細(xì)化分型一直受到諸多領(lǐng)域眾多專家的關(guān)注與重視,日前《中華預(yù)防醫(yī)學(xué)》隆重發(fā)布《基于多參數(shù)流式細(xì)胞術(shù)精細(xì)化分析外周血免疫細(xì)胞亞群的中國專家共識(shí)》,再次將免疫細(xì)胞精細(xì)化分析推向“焦點(diǎn)”!該共識(shí)綜合分析了中國中西醫(yī)結(jié)合學(xué)會(huì)檢驗(yàn)醫(yī)學(xué)專業(yè)委員會(huì)的92位專家所在醫(yī)療機(jī)構(gòu)(大多數(shù)已使用或者部分使用多參數(shù)流式細(xì)胞術(shù)進(jìn)行精細(xì)化分析外周血免疫細(xì)胞亞群)對“基于多參數(shù)流式細(xì)胞術(shù)精細(xì)化分析外周血免疫細(xì)胞亞群”的反饋意見和納入的文獻(xiàn)。多參數(shù)流式細(xì)胞術(shù)是檢測免疫細(xì)胞精細(xì)化亞群、進(jìn)行免疫功能評價(jià)的重要技術(shù)方法,由于增加了更多參數(shù),獲得更多細(xì)胞亞群信息,因此不僅可以在篩查淋巴瘤[1-3]和腫瘤前驅(qū)病變(包括癌前病變和癌前狀態(tài))[4-5]以及部分遺傳和免疫缺陷性疾病診斷[6-8]中發(fā)揮一定作用,還可發(fā)現(xiàn)很多良惡性疾病的發(fā)生、發(fā)展及預(yù)后與免疫細(xì)胞亞群有關(guān)[9-16],在免疫治療[17]和造血干細(xì)胞移[18]等特殊治療后免疫重建中,偏離規(guī)律性的精細(xì)化免疫細(xì)胞亞群變化可能與疾病預(yù)后以及并發(fā)癥有關(guān)。為規(guī)范外周血免疫細(xì)胞亞群的流式細(xì)胞術(shù)精細(xì)化檢測方法和方案,進(jìn)一步促進(jìn)其在臨床疾病診療和健康管理中的應(yīng)用,中國中西醫(yī)結(jié)合學(xué)會(huì)檢驗(yàn)醫(yī)學(xué)專業(yè)委員會(huì)組織專家制定了此專家共識(shí)[19],該共識(shí)包含15條,不僅是基于免疫細(xì)胞精細(xì)化分型的精心之作,也是免疫細(xì)胞精細(xì)化分型廣泛應(yīng)用于臨床的重要依據(jù)。共識(shí)首先指出,強(qiáng)烈建議在基礎(chǔ)的淋巴細(xì)胞亞群檢測的基礎(chǔ)上增加分化發(fā)育、功能性和活化相關(guān)標(biāo)志物,根據(jù)臨床需求選擇不同組合的免疫細(xì)胞亞群精細(xì)化分析,如CD25/CD127、CD28等;第二,建議進(jìn)行多樣性、多表型免疫細(xì)胞檢測,說明精細(xì)化分型免疫學(xué)標(biāo)志組合與亞群定義;第三,強(qiáng)烈建議多管8色檢測方案,精細(xì)化亞群比例分別為占上一層級(jí)亞群的比例。多管8色中,包括TBNK絕對計(jì)數(shù)管、T細(xì)胞管、B細(xì)胞管、TCR管、Treg/Th管和DC/NK/單核管,基礎(chǔ)的TBNK絕對計(jì)數(shù)需要按照國家指南做好質(zhì)控,其他5管精細(xì)化分型可以只報(bào)百分比,如果精細(xì)化分型報(bào)絕對計(jì)數(shù),需要根據(jù)細(xì)胞亞群的特點(diǎn)增加細(xì)胞獲取數(shù)和樣本量;第四,強(qiáng)烈建議使用參考區(qū)間或者參考范圍作為術(shù)語,建議進(jìn)行精細(xì)化免疫細(xì)胞亞群分析獲得健康人參考區(qū)間[19]。
在傳統(tǒng)的簡單淋巴細(xì)胞亞群檢測基礎(chǔ)上,增加分化發(fā)育、功能性和活化相關(guān)標(biāo)志物,根據(jù)臨床應(yīng)用需求選擇不同組合的免疫細(xì)胞亞群精細(xì)化分析。根據(jù)臨床應(yīng)用需求選擇相應(yīng)的標(biāo)志物進(jìn)行不同組合的T細(xì)胞相關(guān)檢測。最低檢測要求:淋巴細(xì)胞占有核細(xì)胞比例與絕對數(shù),T細(xì)胞(包括總T細(xì)胞、CD4+T細(xì)胞、CD8+T細(xì)胞)、B細(xì)胞、NK細(xì)胞占淋巴細(xì)胞比例和絕對數(shù);建議增加標(biāo)志提供Treg細(xì)胞比例、活化和功能性T細(xì)胞比例等免疫細(xì)胞亞群分析指標(biāo)。抗原組合及方案見表1和表2。
推薦強(qiáng)度:強(qiáng)烈建議。
關(guān)于精細(xì)化分析 T 細(xì)胞亞群的免疫學(xué)標(biāo)志組合與亞群定義,建議采用CD3+CD4+CD25+CD127lo/-檢測Treg,CD45RA/CD197將 T 細(xì)胞亞群區(qū)分為TN、TCM、TEM、TEMRA,使用 CD38/HLA-DR 區(qū)分單陽性或雙陽性活化的各亞群 T 細(xì)胞,可選擇性加入CD183/CD196將Th亞群分為CD183+CD196-、CD183-CD196-、CD183-CD196+三個(gè)亞群等。
推薦強(qiáng)度:強(qiáng)烈建議。
根據(jù)臨床應(yīng)用需求選擇B細(xì)胞亞群相關(guān)檢測標(biāo)志。建議精細(xì)化分析免疫細(xì)胞亞群納入CD27、CD24、CD38,酌情納入kappa、lambda、CD5。建議的檢測抗原及方案見表1和表2。基礎(chǔ)免疫細(xì)胞功能分析極少關(guān)注NK細(xì)胞、單核細(xì)胞、DC的亞群區(qū)分。精細(xì)化分析免疫細(xì)胞亞群可以逐次增加標(biāo)志組合,根據(jù)CD16與CD56的表達(dá)區(qū)分NK細(xì)胞亞群,系別陰性(CD3-CD19-CD56-)細(xì)胞群分別使用HLA-DR+CD14+/lo和HLA-DR+CD14-識(shí)別單核細(xì)胞和DC細(xì)胞群(需要注意的是存在天然免疫抑制/低下的患者,單核細(xì)胞以及DC的HLA-DR的表達(dá)可降低),進(jìn)一步使用CD16和CD14對單核細(xì)胞進(jìn)行分群,CD123和CD11c對DC進(jìn)行分群。
目前MDSC的研究主要用于某些良惡性疾病相關(guān)的特殊免疫細(xì)胞亞群研究,在一般的基礎(chǔ)和精細(xì)化分析免疫細(xì)胞亞群中均不主張納入,其他免疫細(xì)胞群也主要用于疾病治療相關(guān)的特殊免疫細(xì)胞檢測,方案也隨著研究和應(yīng)用需求而有所不同。特殊疾病和健康管理相關(guān)的特殊免疫細(xì)胞亞群,根據(jù)疾病特點(diǎn)以及檢測目的選擇相應(yīng)組合進(jìn)行篩查。因?yàn)榻^對計(jì)數(shù)和精細(xì)化亞群分析存在操作的差異性,所以建議分管進(jìn)行。絕對計(jì)數(shù)管僅做基礎(chǔ)的總T細(xì)胞、CD4+T細(xì)胞、CD8+T細(xì)胞、B細(xì)胞、NK細(xì)胞的比例和絕對計(jì)數(shù),可以采用單平臺(tái)和雙平臺(tái)方法,操作與分析的技術(shù)要點(diǎn)和質(zhì)量控制見國家指南。精細(xì)化分析免疫細(xì)胞亞群建議由8色MFC管完成,其精細(xì)化程度與方案根據(jù)臨床應(yīng)用需求選擇。可以采用多管8色及以上方案或一管超多色方法,精細(xì)化亞群比例分別為占上一層級(jí)亞群的比例。共識(shí)建議的8色多管組合方案見表2,使用其他 MFC檢測技術(shù)平臺(tái)時(shí)可參照該方案調(diào)整確定。數(shù)據(jù)分析時(shí)使用Diva、flowjo、kaluza及其他類似功能的軟件均可。建議分析的T細(xì)胞、B細(xì)胞、NK細(xì)胞、DC、單核細(xì)胞、粒細(xì)胞以及各亞群的免疫表型定義以及方案見表1和表2。免疫細(xì)胞亞群檢測結(jié)果判定參照物的術(shù)語,建議使用參考區(qū)間或者參考范圍而非正常值。為了達(dá)到通過免疫功能檢測前瞻性預(yù)警與篩查的目的,建議進(jìn)行精細(xì)化免疫細(xì)胞亞群分析獲得popRI;以popRI作為參照,相關(guān)指南共識(shí)為依據(jù),對個(gè)體的檢測結(jié)果進(jìn)行解讀,給臨床診療和健康管理提供輔助診斷信息或者進(jìn)一步檢測的建議。疾病發(fā)展和治療有規(guī)律性過程,為了預(yù)警疾病進(jìn)展、發(fā)現(xiàn)并發(fā)癥,建議建立合理的治療和疾病恢復(fù)期監(jiān)測時(shí)間點(diǎn)和無并發(fā)癥患者中反映免疫細(xì)胞恢復(fù)的RCV。建議將部分認(rèn)識(shí)較成熟的免疫衰老(如CD57等)、免疫耗竭(如PD1等)相關(guān)指標(biāo)納入精細(xì)化免疫細(xì)胞亞群;將popRI進(jìn)行年齡段的細(xì)分,甚至做逐年變化曲線,并定期修訂。健康管理的地位日益重要,免疫功能檢測應(yīng)該賦予一定的早期篩查淋巴瘤和腫瘤前驅(qū)病變的作用,以及為一些淋巴細(xì)胞克隆性指標(biāo)建立popRI,建議逐步將kappa/lambda和TRBC1、TCRVδ1和/或TCRVδ2納入精細(xì)化免疫細(xì)胞亞群檢測。


從該版中國專家共識(shí)可以看出,“精細(xì)化分析”及“多參數(shù)”十分關(guān)鍵,傳統(tǒng)的免疫細(xì)胞檢測和功能評估過于簡單,局限于檢測T、B、NK細(xì)胞的比例及絕對數(shù),反映免疫細(xì)胞的信息不夠全面、立體,精細(xì)化分析外周血免疫細(xì)胞亞群增加了調(diào)節(jié)性T細(xì)胞(regulatory T cell,Treg)、樹突狀細(xì)胞(dendritic cells,DC)等各類免疫細(xì)胞,以及檢測其分化發(fā)育、功能性和活化狀態(tài)相關(guān)標(biāo)志物,更加精準(zhǔn)地描述免疫細(xì)胞所處的階段和相關(guān)的細(xì)胞功能,為臨床提供更多可選擇信息。
參考文獻(xiàn)
[1] Qiu ZY, Shen WY, Fan L, et al. Assessment of clonality in Tcell large granular lymphocytic leukemia: flow cytometric T cell receptor Vβ repertoire and T cell receptor gene rearrangement[J]. Leuk Lymphoma, 2015, 56(2):324-331. DOI: 10.3109/10428194.2014.921297.[2] Berg H, Otteson GE, Corley H, et al. Flow cytometric evaluation of TRBC1 expression in tissue specimens and body fluids is a novel and specific method for assessment of T-cell clonality and diagnosis of Tcell neoplasms[J]. Cytometry B Clin Cytom, 2021, 100(3): 361-369. DOI: 10.1002/cyto.b.21881.[3] Chen X, Zhao S, Liu L, et al. Flow Cytometric Pattern of TCRVδ Subtype Expression Rapidly Identifies γδT Cell Lymphoma[J]. Front Oncol, 2020, 10:844. DOI: 10.3389/ fonc.2020.00844.[4] Galigalidou C, Zaragoza-Infante L, Iatrou A, et al. Understanding Monoclonal B Cell Lymphocytosis: An Interplay of Genetic and Microenvironmental Factors[J]. Front Oncol, 2021, 11: 769612. DOI: 10.3389/ fonc.2021.769612.[5] de Faria-Moss M, Yamamoto M, Arrais-Rodrigues C, et al. High frequency of chronic lymphocytic leukemialike low-count monoclonal B-cell lymphocytosis in Japanese descendants living in Brazil[J]. Haematologica, 2020, 105(6):e298-e301. DOI: 10.3324/haematol.2019.230813.[6] van der Burg M, Kalina T, Perez-Andres M, et al. The EuroFlow PID Orientation Tube for Flow Cytometric Diagnostic Screening of Primary Immunodeficiencies of the Lymphoid System[J]. Front Immunol, 2019, 10: 246. DOI: 10.3389/fimmu.2019.00246.[7] de Haas M, Kleijer M, van Zwieten R, et al. Neutrophil Fc gamma RIIIb deficiency, nature, and clinical consequences: a study of 21 individuals from 14 families [J]. Blood, 1995, 86: 2403-2413.[8] Lima M. Laboratory studies for paroxysmal nocturnal hemoglobinuria, with emphasis on flow cytometry[J]. Pract Lab Med, 2020, 20: e00158. DOI: 10.1016/j. plabm.2020.e00158.[9] Bizymi N, Matthaiou AM, Matheakakis A, et al. New Perspectives on MyeloidDerived Suppressor Cells and Their Emerging Role in Haematology[J]. J Clin Med, 2022, 11(18):5326. DOI: 10.3390/jcm11185326.[10] Xu X, Wei F, Xiao L, et al. High proportion of circulating CD8 + CD28-senescent T cells is an independent predictor of distant metastasis in nasopharyngeal canrcinoma after radiotherapy[J]. J Transl Med, 2023, 21(1): 64. DOI: 10.1186/s12967-023-03912-2.[11] Neu SD, Dittel BN. Characterization of Definitive Regulatory B Cell Subsets by Cell Surface Phenotype,Function and Context[J]. Front Immunol, 2021, 12: 787464. DOI: 10.3389/fimmu.2021.787464.[12] Oras A, Peet A, Giese T, et al. A study of 51 subtypes of peripheral blood immune cells in newly diagnosed young type 1 diabetes patients[J]. Clin Exp Immunol, 2019, 198(1):57-70. DOI: 10.1111/cei.13332.[13] Rodriguez-Iturbe B, Pons H, Johnson RJ. Role of the Immune System in Hypertension[J].Physiol Rev, 2017, 97(3):1127-1164. DOI: 10.1152/physrev.00031.2016.[14] Hardcastle SL, Brenu EW, Johnston S, et al. Characterisation of cell functions and receptors in Chronic Fatigue Syndrome/Myalgic Encephalomyelitis (CFS/ME) [J]. BMC Immunol, 2015, 16:35. DOI: 10.1186/ s12865-015-0101-4.[15] 張曉暢, 呂躍斌, 周錦輝, 等. 中國9個(gè)長壽地區(qū)65歲及以上人群中性粒細(xì)胞與淋巴細(xì)胞比值與抑郁癥狀的關(guān)聯(lián)研究[J].中華預(yù)防醫(yī)學(xué)雜志 , 2021, 55(1): 25-30. DOI: 10.3760/cma.j.cn112150-20200812-01112.[16] Liu W, Zhang Y, Zhu W, et al. Sinomenine Inhibits the Progression of Rheumatoid Arthritis by Regulating the Secretion of Inflammatory Cytokines and Monocyte/Macrophage Subsets[J]. Front Immunol, 2018, 9:2228. DOI: 10.3389/fimmu.2018.02228.[17] 中國中西醫(yī)結(jié)合學(xué)會(huì)檢驗(yàn)醫(yī)學(xué)專業(yè)委員會(huì).流式細(xì)胞術(shù)在嵌合抗原受體T 細(xì)胞免疫治療相關(guān)檢驗(yàn)中的應(yīng)用專家共識(shí)[J]. 中華檢驗(yàn)醫(yī)學(xué)雜志, 2022, 45(8): 790-801. DOI: 10.3760/cma.j.cn114452-20220218-00081.[18] Skert C, Perucca S, Chiarini M, et al. Sequential monitoring of lymphocyte subsets and of T-and-B cell neogenesis indexes to identify time-varying immunologic profiles in relation to graft-versus-host disease and relapse after allogeneic stem cell transplantation[J]. PLoS One, 2017, 12(4):e0175337. DOI: 10.1371/journal.pone.0175337.[19]中國中西醫(yī)結(jié)合學(xué)會(huì)檢驗(yàn)醫(yī)學(xué)專業(yè)委員會(huì). 基于多參數(shù)流式細(xì)胞術(shù)精細(xì)化分析外周血免疫細(xì)胞亞群的中國專家共識(shí)[J].中華預(yù)防醫(yī)學(xué)雜志, 2023, 57(11): 1729-174